Флуоресцентная корреляционная спектроскопия - Fluorescence correlation spectroscopy

Флуоресцентная корреляционная спектроскопия (FCS) представляет собой корреляционный анализ флуктуации флуоресценция интенсивность. Анализ предоставляет параметры физики при колебаниях. Одно из интересных приложений этого метода - анализ колебаний концентрации флуоресцентных частиц (молекул) в растворе. В этом приложении наблюдается флуоресценция, испускаемая из очень крошечного пространства в растворе, содержащем небольшое количество флуоресцентных частиц (молекул). Интенсивность флуоресценции колеблется из-за Броуновское движение частиц. Другими словами, количество частиц в подпространстве, определяемом оптической системой, случайным образом изменяется вокруг среднего числа. Анализ дает среднее количество флуоресцентных частиц и среднее время диффузии, когда частица проходит через пространство. В конце концов, определяются как концентрация, так и размер частицы (молекулы). Оба параметра важны для биохимических исследований, биофизики и химии.

FCS - такой чувствительный аналитический инструмент, потому что он наблюдает небольшое количество молекул (от наномолярных до пикомолярных концентраций) в небольшом объеме (~ 1 мкм³).^[1] В отличие от других методов (например, ВЭЖХ анализ) FCS не имеет процесса физического разделения; вместо этого он достигает своего пространственного разрешения за счет своей оптики. Кроме того, FCS позволяет наблюдать за молекулами, меченными флуоресценцией, в биохимическом пути в интактных живых клетках.^[2] Это открывает новую область «биохимии in situ или in vivo»: отслеживание биохимических путей в интактных клетках и органах.^[3]

Обычно FCS используется в контексте оптическая микроскопия, особенно Конфокальная микроскопия или же микроскопия с двухфотонным возбуждением. В этих методах свет фокусируется на образце, и измеряемые колебания интенсивности флуоресценции (из-за распространение, физические или химические реакции, агрегация и т. д.) анализируются с использованием временной автокорреляции. Поскольку измеряемое свойство по существу связано с величиной и / или количеством колебаний, существует оптимальный режим измерения на уровне, когда отдельные виды входят или выходят из объема наблюдения (или включаются и выключаются в объеме). Когда одновременно измеряется слишком много объектов, общие флуктуации малы по сравнению с общим сигналом и могут быть неразрешимы - в другом направлении, если отдельные события флуктуации слишком редки по времени, одно измерение может занять слишком много времени. длинный. FCS - это своего рода флуоресцентный аналог динамическое рассеяние света, который использует когерентное рассеяние света вместо (некогерентной) флуоресценции.

Когда соответствующая модель известна, FCS может использоваться для получения количественной информации, такой как

• коэффициенты диффузии
• гидродинамические радиусы
• средние концентрации
• скорости кинетических химических реакций
• синглет-триплетная динамика

Поскольку флуоресцентные маркеры бывают разных цветов и могут быть специфически связаны с определенной молекулой (например, с белками, полимерами, металлокомплексами и т. Д.), Можно изучать поведение отдельных молекул (в быстрой последовательности в составных растворах) . С развитием чувствительных детекторов, таких как лавинные фотодиоды обнаружение сигнала флуоресценции, исходящего от отдельных молекул в сильно разбавленных образцах, стало практичным. Благодаря этому появилась возможность проводить эксперименты с FCS на самых разных образцах, от материаловедения до биологии. Появление сконструированных клеток с генетически помеченными белками (такими как зеленый флуоресцентный белок ) сделал FCS обычным инструментом для изучения молекулярной динамики в живых клетках.^[4]

История

Методы корреляции сигналов были впервые экспериментально применены к флуоресценции в 1972 году Магде, Элсоном и Уэббом,^[5] которые поэтому обычно считаются «изобретателями» FCS. Вскоре после этого методика получила дальнейшее развитие в группе статей этих и других авторов, в которых были заложены теоретические основы и типы приложений.^[6][7][8] См. Томпсон (1991).^[9] для обзора того периода.

Начиная с 1993 г.,^[10] ряд усовершенствований в методах измерения - особенно с использованием конфокальной микроскопии, а затем двухфотонной микроскопии - для лучшего определения измеряемого объема и отклонения фона - значительно улучшили отношение сигнал / шум и позволили повысить чувствительность отдельных молекул.^[11][12] С тех пор интерес к FCS возобновился, и по состоянию на август 2007 года в Web of Science было опубликовано более 3000 статей с использованием FCS. См. Кричевского и Бонне.^[13] для обзора. Кроме того, наблюдается всплеск активности, расширяющей FCS различными способами, например, на лазерное сканирование и конфокальную микроскопию с вращающимся диском (из стационарных одноточечных измерений), при использовании кросс-корреляции (FCCS) между двумя флуоресцентными каналами вместо автокорреляции, а при использовании Фёрстеровский резонансный перенос энергии (FRET) вместо флуоресценции.

Типичная настройка FCS

Типичная настройка FCS

Типичная установка FCS состоит из лазерной линии (обычно с длинами волн от 405 до 633 нм (cw ), и от 690–1100 нм (импульсный)), который отражается в объектив микроскопа дихроичным зеркалом. Лазерный луч фокусируется в образце, который содержит флуоресцентные частицы (молекулы) в таком большом разбавлении, что лишь некоторые из них находятся в фокусном пятне (обычно 1–100 молекул в одной флаконе). Когда частицы пересекают фокусный объем, они флуоресцируют. Этот свет собирается тем же объективом, и, поскольку он смещен в красную область относительно возбуждающего света, он проходит через дихроичное зеркало, достигая детектора, обычно фотоумножитель трубка, лавинный фотодиод детектор или однофотонный детектор на сверхпроводящей нанопроволоке. Результирующий электронный сигнал может быть сохранен либо непосредственно как график зависимости интенсивности от времени для последующего анализа, либо вычислен для генерации автокорреляция напрямую (для этого требуются специальные карты приобретения). Кривая FCS сама по себе представляет только временной спектр. Отсюда следует делать выводы о физических явлениях с помощью соответствующих моделей. Интересующие параметры находятся после подгонки автокорреляционной кривой к смоделированным функциональным формам.^[14]

Объем измерения

Объем измерения представляет собой свертку геометрии освещения (возбуждения) и детектирования, которая является результатом задействованных оптических элементов. Полученный объем математически описывается функция разброса точки (или PSF), по сути, это изображение точечного источника. PSF часто описывают как эллипсоид (с нерезкими границами) с диаметром фокуса в несколько сотен нанометров и почти одним микрометром вдоль оптической оси. Форма значительно варьируется (и оказывает большое влияние на получаемые кривые FCS) в зависимости от качества оптических элементов (крайне важно избежать астигматизма и проверить реальную форму PSF на приборе). В случае конфокальной микроскопии и для небольших отверстий (около одной единицы Эйри) PSF хорошо аппроксимируется гауссианами:

${\displaystyle PSF(r,z)=I_{0}e^{-2r^{2}/\omega _{xy}^{2}}e^{-2z^{2}/\omega _{z}^{2}}}$

куда ${\displaystyle I_{0}}$ - пиковая интенсивность, r и z - радиальное и осевое положение, а ${\displaystyle \omega _{xy}}$ и ${\displaystyle \omega _{z}}$ - радиальный и осевой радиусы, а ${\displaystyle \omega _{z}>\omega _{xy}}$. Эта гауссова форма используется при выводе функциональной формы автокорреляции.

Обычно ${\displaystyle \omega _{xy}}$ составляет 200–300 нм, а ${\displaystyle \omega _{z}}$ является 2–6 раз больше.^[15] Одним из распространенных способов калибровки параметров измеряемого объема является выполнение FCS для веществ с известным коэффициентом диффузии и концентрацией (см. Ниже). Коэффициенты диффузии обычных флуорофоров в воде приведены в следующем разделе.

Гауссово приближение работает в различной степени в зависимости от оптических деталей, и иногда могут применяться поправки, чтобы компенсировать ошибки в приближении.^[16]

Автокорреляционная функция

Необработанные данные FCS и коррелированные данные.

(Временная) автокорреляционная функция - это корреляция временного ряда с самим собой, смещенным во времени. ${\displaystyle \tau }$, как функция ${\displaystyle \tau }$:

${\displaystyle G(\tau )={\frac {\langle \delta I(t)\delta I(t+\tau )\rangle }{\langle I(t)\rangle ^{2}}}={\frac {\langle I(t)I(t+\tau )\rangle }{\langle I(t)\rangle ^{2}}}-1}$

куда ${\displaystyle \delta I(t)=I(t)-\langle I(t)\rangle }$ - отклонение от средней интенсивности. Нормализация (знаменатель) здесь наиболее часто используется для FCS, потому что тогда корреляция на ${\displaystyle \tau =0}$, грамм(0) относится к среднему количеству частиц в измерительном объеме.

Например, необработанные данные FCS и их автокорреляция для свободно диффундирующего родамина 6G показаны на рисунке справа. На графике вверху показана зависимость интенсивности флуоресценции от времени. Интенсивность колеблется по мере того, как Родамин 6G входит и выходит из фокального объема. На нижнем графике показана автокорреляция тех же данных. Информацию о скорости диффузии и концентрации можно получить с помощью одной из моделей, описанных ниже.

Для гауссова профиля освещения ${\displaystyle PSF(r,z)}$, автокорреляционная функция дается общей мастер-формулой^[17]

${\displaystyle G(\tau )={\frac {1}{\langle N\rangle }}\left\langle \exp \left(-{\frac {\Delta X(\tau )^{2}+\Delta Y(\tau )^{2}}{w_{xy}^{2}}}-{\frac {\Delta Z(\tau )^{2}}{w_{z}^{2}}}\right)\right\rangle ,}$

где вектор ${\displaystyle \Delta {\vec {R}}(\tau )=(\Delta X(\tau ),\Delta Y(\tau ),\Delta Z(\tau ))}$ обозначает стохастическое смещение флуорофора в пространстве после времени ${\displaystyle \tau }$.Выражение допустимо, если среднее число ${\displaystyle \langle N\rangle }$ флуорофоров в фокусном объеме мало, и если темные состояния и т. д. флуорофора можно не учитывать. В частности, не было сделано никаких предположений о типе исследуемого диффузионного движения. Формула позволяет интерпретировать ${\displaystyle G(\tau )}$ как (i) a вероятность возврата для малых параметров пучка ${\displaystyle w_{xy},w_{z}}$ и (ii) момент-производящая функция из ${\displaystyle |\Delta {\vec {R}}(\tau )|^{2}}$ если ${\displaystyle w_{xy},w_{z}}$ разнообразны.

Интерпретация автокорреляционной функции

Для извлечения интересующих величин данные автокорреляции могут быть подогнаны, обычно с использованием нелинейный алгоритм наименьших квадратов. Функциональная форма фитинга зависит от типа динамики (и рассматриваемой оптической геометрии).

Нормальная диффузия

Коррелированные данные и модель нормальной диффузии

Флуоресцентные частицы, используемые в FCS, имеют небольшие размеры и поэтому в растворе испытывают тепловые движения. Таким образом, простейший эксперимент FCS - это нормальная трехмерная диффузия, для которой автокорреляция равна:

${\displaystyle \ G(\tau )=G(0){\frac {1}{(1+(\tau /\tau _{D}))(1+a^{-2}(\tau /\tau _{D}))^{1/2}}}+G(\infty )}$

куда ${\displaystyle a=\omega _{z}/\omega _{xy}}$ отношение осевого к радиальному ${\displaystyle e^{-2}}$ радиусы измерительного объема, и ${\displaystyle \tau _{D}}$ - характерное время пребывания. Эта форма была получена в предположении гауссова измерения объема. Обычно подгонка имеет три свободных параметра: G (0), ${\displaystyle G(\infty )}$, и ${\displaystyle \tau _{D}}$- из которого можно получить коэффициент диффузии и концентрацию флуорофора.

С нормализацией, использованной в предыдущем разделе, грамм(0) дает среднее количество диффузоров в объеме или, что эквивалентно - с учетом размера объема для наблюдения - среднюю концентрацию:

${\displaystyle \ G(0)={\frac {1}{\langle N\rangle }}={\frac {1}{V_{\text{eff}}\langle C\rangle }},}$

где эффективный объем находится путем интегрирования гауссовой формы измерительного объема и определяется как:

${\displaystyle \ V_{\text{eff}}=\pi ^{3/2}\omega _{xy}^{2}\omega _{z}.\,}$

D дает коэффициент диффузии:

${\displaystyle \ D=\omega _{xy}^{2}/{4\tau _{D}}.}$

Аномальная диффузия

Смотрите также: Аномальная диффузия

Если диффундирующим частицам препятствуют препятствия или их толкает сила (молекулярные двигатели, поток и т. Д.), Динамика часто недостаточно хорошо описывается моделью нормальной диффузии, где среднеквадратичное смещение (MSD) линейно растет со временем. Вместо этого диффузию лучше описать как аномальная диффузия, где временная зависимость СКО нелинейна как в степенной:

${\displaystyle \ MSD=6D_{a}t^{\alpha }\,}$

куда ${\displaystyle D_{a}}$ - коэффициент аномальной диффузии. «Аномальная диффузия» обычно относится только к этой очень общей модели, а не ко многим другим возможностям, которые можно было бы назвать аномальными. Кроме того, степенной закон, в строгом смысле слова, является ожидаемой формой только для узкого диапазона строго определенных систем, например, когда распределение препятствий равно фрактал. Тем не менее, степенной закон может быть полезным приближением для более широкого круга систем.

Автокорреляционная функция FCS для аномальной диффузии:

${\displaystyle G(\tau )=G(0){\frac {1}{(1+(\tau /\tau _{D})^{\alpha })(1+a^{-2}(\tau /\tau _{D})^{\alpha })^{1/2}}}+G(\infty ),}$

где аномальный показатель ${\displaystyle \alpha }$ то же самое, что и выше, и становится свободным параметром при подгонке.

Используя FCS, было показано, что аномальный показатель степени указывает на степень молекулярной скученности (она меньше единицы и меньше для большей степени скученности).^[18]

Полидисперсная диффузия

Если есть диффундирующие частицы с разными размерами (коэффициентами диффузии), обычно используется функция, которая является суммой однокомпонентных форм:

${\displaystyle \ G(\tau )=G(0)\sum _{i}{\frac {\alpha _{i}}{(1+(\tau /\tau _{D,i}))(1+a^{-2}(\tau /\tau _{D,i}))^{1/2}}}+G(\infty )}$

где сумма складывается из числа частиц различных размеров, индексированных i, и ${\displaystyle \alpha _{i}}$ дает весовой коэффициент, связанный с квантовым выходом и концентрацией каждого типа. Это вводит новые параметры, что затрудняет подгонку, так как необходимо искать многомерное пространство. Нелинейная аппроксимация методом наименьших квадратов обычно становится нестабильной даже при небольшом количестве ${\displaystyle \tau _{D,i}}$с. Более надежной схемой подбора, особенно полезной для полидисперсных образцов, является метод максимальной энтропии.^[19]

Распространение с потоком

С диффузией вместе с равномерным потоком со скоростью ${\displaystyle v}$ в поперечном направлении автокорреляция:^[20]

${\displaystyle \ G(\tau )=G(0){\frac {1}{(1+(\tau /\tau _{D}))(1+a^{-2}(\tau /\tau _{D}))^{1/2}}}\times \exp[-(\tau /\tau _{v})^{2}\times {\frac {1}{1+\tau /\tau _{D}}}]+G(\infty )}$

куда ${\displaystyle \tau _{v}=\omega _{xy}/v}$ - среднее время пребывания при наличии только потока (без диффузии).

Химическая релаксация

Широкий спектр возможных экспериментов FCS включает химические реакции, которые постоянно отклоняются от равновесия из-за тепловых движений (а затем «расслабляются»). В отличие от диффузии, которая также является релаксационным процессом, флуктуации вызывают изменения между состояниями с разной энергией. Одна очень простая система, показывающая химическую релаксацию, могла бы быть стационарным сайтом связывания в измерительном объеме, где частицы производят сигнал только при связывании (например, FRET, или если время диффузии намного быстрее, чем интервал выборки). В этом случае автокорреляция:

${\displaystyle \ G(\tau )=G(0)\exp(-\tau /\tau _{B})+G(\infty )}$

куда

${\displaystyle \ \tau _{B}=(k_{\text{on}}+k_{\text{off}})^{-1}}$

- время релаксации и зависит от кинетики реакции (скорости включения и выключения), а также:

${\displaystyle G(0)={\frac {1}{\langle N\rangle }}{\frac {k_{on}}{k_{off}}}={\frac {1}{\langle N\rangle }}K}$

связана с константой равновесия K.

Большинство систем с химической релаксацией также демонстрируют измеримую диффузию, а функция автокорреляции будет зависеть от деталей системы. Если диффузия и химическая реакция разделены, комбинированная автокорреляция является продуктом химической и диффузной автокорреляций.

Коррекция триплетного состояния

Вышеуказанные автокорреляции предполагают, что флуктуации не связаны с изменениями флуоресцентных свойств частиц. Однако для большинства (био) органических флуорофоров, например. зеленый флуоресцентный белок, родамин, Cy3 и Алекса Флуор красители - некоторая часть освещенных частиц возбуждается до триплетное состояние (или другие безызлучательные состояния распада), а затем не испускают фотоны для характерного времени релаксации ${\displaystyle \tau _{F}}$. Обычно ${\displaystyle \tau _{F}}$ порядка микросекунд, что обычно меньше интересующей динамики (например, ${\displaystyle \tau _{D}}$), но достаточно большой, чтобы его можно было измерить. К автокорреляции добавляется мультипликативный член, чтобы учесть триплетное состояние. Для нормальной диффузии:

${\displaystyle \ G(\tau )=G(0){\frac {(1-F+Fe^{-\tau /\tau _{F}})}{(1-F)}}{\frac {1}{(1+(\tau /\tau _{D,i}))(1+a^{-2}(\tau /\tau _{D,i}))^{1/2}}}+G(\infty )}$^[21]

куда ${\displaystyle \ F}$ - доля частиц, перешедших в триплетное состояние, и ${\displaystyle \ \tau _{F}}$ - соответствующее время релаксации триплетного состояния. Если интересующая нас динамика намного медленнее, чем релаксация триплетного состояния, кратковременная составляющая автокорреляции может быть просто усечена, и триплетный член не нужен.

Обычные флуоресцентные зонды

Флуоресцентные частицы, используемые в FCS, обычно представляют собой представляющую интерес биомолекулу, которая была помечена флуорофором (используя иммуногистохимия например), или "голый" флуорофор, который используется для исследования некоторой представляющей интерес среды (например, цитоскелета клетки). В следующей таблице приведены коэффициенты диффузии некоторых распространенных флуорофоров в воде при комнатной температуре и длины волн их возбуждения.

Флуоресцентный краситель	${\displaystyle \ D}$ [10^−10 м^2 s^−1]	Т [° C]	Возбуждение длина волны [нм]	Ссылка
Родамин 6G	2.8, 3.0, 4.14 ± 0.05, 4.20 ± 0.06	25	514	[8][22][23][24]
Родамин 110	2.7		488	[25]
Тетраметил родамин	2.6		543
Cy3	2.8		543
Cy5	2.5, 3.7 ± 0.15	25	633	[26][27]
карбоксифлуоресцеин	3.2		488
Алекса 488	1.96, 4.35	22.5±0.5	488	[25][28]
Атто 655-малеимид	4.07 ± 0.1	25	663	[23]
Атто 655-карбоновая кислота	4.26 ± 0.08	25	663	[23]
2 ', 7'-дифторфлуоресцеин (Орегон Грин 488)	4.11 ± 0.06	25	498	[23]

Варианты FCS

FCS почти всегда относится к одноточечным одноканальным измерениям временной автокорреляции, хотя термин «флуоресцентная корреляционная спектроскопия» вне его исторического научного контекста не подразумевает такого ограничения. FCS был расширен различными исследователями в различных вариациях, при этом каждое расширение генерирует другое имя (обычно акроним).

Точечная вариационная корреляционная спектроскопия флуоресценции (svFCS)

В то время как FCS - это точечное измерение, обеспечивающее время диффузии в заданном объеме наблюдения, svFCS - это метод, при котором точка наблюдения изменяется для измерения времени диффузии при разных размерах пятна. Связь между временем диффузии и площадью пятна является линейной и может быть нанесена на график, чтобы расшифровать основной вклад удержания. Полученная кривая называется законом диффузии. Этот метод используется в биологии для изучения организации плазматической мембраны живых клеток.

${\displaystyle \ \omega _{xy}^{2}=4D\tau _{D}+t_{0}}$

куда ${\displaystyle t_{0}}$ пересечение оси y. В случае броуновской диффузии ${\displaystyle t_{0}=0}$. В случае ограничения из-за изолированных доменов, ${\displaystyle t_{0}>0}$ тогда как в случае изолированных доменов, ${\displaystyle t_{0}<0}$.

svFCS исследования живых клеток и моделирование документов^{[29][30][31][32][33]}

Флуоресцентная корреляционная спектроскопия с контролем объема отбора проб (SVC-FCS):^[34]

z-сканирование FCS^[35]

FCS с наноапертурами: преодоление дифракционного барьера^[36]

STED-FCS:^[37]

Флуоресцентная кросс-корреляционная спектроскопия (FCCS )

FCS иногда используется для изучения молекулярных взаимодействий с использованием различий во времени диффузии (например, продукт реакции ассоциации будет больше и, следовательно, иметь большее время диффузии, чем реагенты по отдельности); однако FCS относительно нечувствителен к молекулярной массе, что видно из следующего уравнения, связывающего молекулярную массу со временем диффузии глобулярных частиц (например, белков):

${\displaystyle \ \tau _{D}={\frac {3\pi \omega _{xy}^{2}\eta }{2kT}}(M)^{1/3}}$

куда ${\displaystyle \ \eta }$ - вязкость образца и ${\displaystyle \ M}$ - молекулярная масса флуоресцентных частиц. На практике времена диффузии должны быть достаточно разными - не менее 1,6 раза, что означает, что молекулярные массы должны отличаться в 4 раза.^[38] Двухцветная кросс-корреляционная спектроскопия флуоресценции (FCCS) измеряет взаимодействия путем взаимной корреляции двух или более флуоресцентных каналов (по одному каналу для каждого реагента), что позволяет различать взаимодействия более чувствительно, чем FCS, особенно когда изменение массы в реакции невелико.

Методы анализа яркости (N&B,^[39] ПЧ,^[40] FIDA,^[41] Кумулянтный анализ^[42])

Флуоресцентная кросс-корреляционная спектроскопия преодолевает слабую зависимость скорости диффузии от молекулярной массы, рассматривая многоцветное совпадение. А как насчет гомо-взаимодействий? Решение заключается в анализе яркости. Эти методы используют неоднородность в распределении интенсивности флуоресценции для измерения молекулярной яркости различных видов в образце. Поскольку димеры будут содержать в два раза больше флуоресцентных меток, чем мономеры, их молекулярная яркость будет примерно вдвое больше, чем у мономеров. В результате относительная яркость является чувствительной мерой олигомеризации. Средняя молекулярная яркость (${\displaystyle \langle \epsilon \rangle }$) связана с дисперсией (${\displaystyle \sigma ^{2}}$) и средней интенсивности (${\displaystyle \langle I\rangle }$) следующее:^[43]

${\displaystyle \ \langle \varepsilon \rangle ={\frac {\sigma ^{2}-\langle I\rangle }{\langle I\rangle }}=\sum _{i}f_{i}\varepsilon _{i}}$

Здесь ${\displaystyle f_{i}}$ и ${\displaystyle \epsilon _{i}}$ - фракционная интенсивность и молекулярная яркость соответственно видов ${\displaystyle i}$.

FRET-FCS

Другой подход на основе FCS к изучению молекулярных взаимодействий использует флуоресцентный резонансный перенос энергии (FRET) вместо флуоресценции и называется FRET-FCS.^[44] В FRET есть два типа датчиков, как и в FCCS; однако существует только один канал, и свет обнаруживается только тогда, когда два зонда находятся очень близко - достаточно близко, чтобы гарантировать взаимодействие. Сигнал FRET слабее, чем при флуоресценции, но имеет то преимущество, что сигнал присутствует только во время реакции (кроме автофлуоресценция ).

Сканирование FCS

В сканирующей флуоресцентной корреляционной спектроскопии (sFCS) измерительный объем перемещается по образцу определенным образом. Введение сканирования мотивировано его способностью облегчить или устранить несколько отдельных проблем, часто встречающихся в стандартной FCS, и, таким образом, расширить диапазон применимости методов корреляции флуоресценции в биологических системах.^[45]

Некоторые варианты FCS применимы только к серийным сканирующим лазерным микроскопам. Спектроскопия корреляции изображений и ее вариации были реализованы на сканирующем конфокальном или сканирующем двухфотонном микроскопе, но были перенесены на другие микроскопы, такие как конфокальный микроскоп с вращающимся диском. Растровый ICS (RICS),^[46] и позиционно-чувствительная FCS (PSFCS)^[47] учитывать временную задержку между частями сканирования изображения в анализ. Кроме того, низкоразмерные сканы (например, круглое кольцо)^[48]- возможно только в системе сканирования - может получить доступ к временным шкалам между измерениями отдельной точки и полным изображением. Путь сканирования также адаптирован для отслеживания частиц.^[49]

Вращающийся диск FCS и пространственное отображение

Любой из методов корреляционной спектроскопии изображений также может быть выполнен на конфокальном микроскопе с вращающимся диском, который на практике может получить более высокие скорости визуализации по сравнению с лазерным сканирующим конфокальным микроскопом. Этот подход недавно был применен к диффузии в пространственно изменяющейся сложной среде, создав карту разрешения пикселей для коэффициента диффузии.^[50] Пространственное отображение диффузии с FCS было впоследствии распространено на систему TIRF.^[51] Пространственное отображение динамики с использованием методов корреляции применялось и раньше, но только в редких точках.^[52] или с грубым разрешением.^[53]

Корреляционная спектроскопия изображений (ICS)

Когда движение медленное (в биологии, например, диффузия в мембране), получение адекватных статистических данных из одноточечного эксперимента FCS может занять непомерно много времени. Больше данных можно получить, выполнив эксперимент в нескольких пространственных точках параллельно с использованием конфокального лазерного сканирующего микроскопа. Этот подход получил название спектроскопии корреляции изображений (ICS).^[54] Затем измерения можно усреднить вместе.

Другой вариант ICS выполняет пространственную автокорреляцию изображений, которая дает информацию о концентрации частиц.^[55] Затем корреляция усредняется по времени. Хотя белый шум камеры не автокоррелируется во времени, он происходит в пространстве - это создает амплитуду белого шума в функции пространственной автокорреляции, которую необходимо учитывать при подборе амплитуды автокорреляции, чтобы найти концентрацию флуоресцентных молекул.

Естественным продолжением версий временной и пространственной корреляции является пространственно-временная ICS (STICS).^[53] В STICS нет явного усреднения по пространству или времени (только усреднение, присущее корреляции). В системах с неизотропным движением (например, направленный поток, асимметричная диффузия) STICS может извлекать информацию о направлении. Вариант, который тесно связан со STICS (преобразованием Фурье), это k-космическая корреляционная спектроскопия изображений (kICS).^[56]

Существуют также кросс-корреляционные версии ICS, которые могут определять концентрацию, распределение и динамику совместно локализованных флуоресцентных молекул.^[54] Молекулы считаются совместно локализованными, когда отдельные вклады флуоресценции неразличимы из-за перекрывающихся функций разброса точек интенсивности флуоресценции.

Корреляционная спектроскопия изображения частиц (PICS)^[57]

PICS - это мощный инструмент анализа, который разрешает корреляции на нанометровой длине и в миллисекундной шкале времени. На основе методов пространственно-временной корреляционной спектроскопии изображений,^[53] он использует высокую позиционную точность отслеживания одиночных частиц. Хотя традиционные методы отслеживания не работают, если пересекаются траектории нескольких частиц, этот метод в принципе работает для сколь угодно больших плотностей молекул и динамических параметров (например, коэффициентов диффузии, скоростей), пока можно идентифицировать отдельные молекулы. Это дешево и надежно в вычислительном отношении и позволяет идентифицировать и количественно оценивать движения (например, диффузию, активный перенос, ограниченную диффузию) в ансамбле частиц без каких-либо априорных знаний о динамике.

Расширение кросс-корреляционной спектроскопии изображений частиц (PICCS) доступно для биологических процессов, в которых участвуют несколько партнеров по взаимодействию, что можно наблюдать с помощью двухцветной микроскопии.^[58]

FCS Оптическая флуктуационная визуализация сверхвысокого разрешения (fcsSOFI)

Визуализация оптических флуктуаций сверхвысокого разрешения (SOFI) - это метод сверхвысокого разрешения, который обеспечивает пространственное разрешение ниже дифракционного предела путем анализа постобработки с корреляционными уравнениями, аналогично FCS. В то время как в первоначальных отчетах SOFI использовались колебания от стационарного мигания флуорофоров, FCS был объединен с SOFI, где колебания производятся от рассеивающих зондов для создания пространственных карт сверхвысокого разрешения коэффициентов диффузии.^[59] Это было применено для понимания диффузии и пространственных свойств пористых и ограниченных материалов. Это включает агарозу^[59] и термочувствительные гидрогели PNIPAM,^[60] жидкие кристаллы,^[59] и полимеры с разделением фаз и конденсаты РНК / белка.^[61]

Полное внутреннее отражение FCS

Флуоресценция полного внутреннего отражения (TIRF) - это метод микроскопии, который чувствителен только к тонкому слою у поверхности покровного стекла, что значительно снижает фоновую флуоресценцию. FCS была расширена до микроскопов этого типа и получила название TIR-FCS.^[62] Поскольку интенсивность флуоресценции в TIRF экспоненциально спадает с расстоянием от покровного стекла (вместо гауссовой с конфокальной), автокорреляционная функция отличается.

Визуализация FCS с использованием световой флуоресцентной микроскопии

Световая флуоресцентная микроскопия или селективная плоская визуализирующая микроскопия (SPIM) использует освещение, которое осуществляется перпендикулярно направлению наблюдения с помощью тонкого слоя (лазерного) света. При определенных условиях этот принцип освещения может быть объединен с флуоресцентной корреляционной спектроскопией, чтобы обеспечить пространственно разрешенное отображение подвижности и взаимодействий флуоресцирующих частиц, таких как меченные GFP белки, внутри живых биологических образцов.^[63]

Другие флуоресцентные динамические подходы

Есть две основные некорреляционные альтернативы FCS, которые широко используются для изучения динамики флуоресцентных видов.

Восстановление флуоресценции после фотообесцвечивания (FRAP)

В FRAP, область кратковременно подвергается воздействию интенсивного света, необратимого фотообесцвечивания флуорофоров, и визуализируется восстановление флуоресценции за счет диффузии соседних (неотбеленных) флуорофоров. Основным преимуществом FRAP перед FCS является простота интерпретации качественных экспериментов, распространенных в клеточной биологии. Различия между линиями клеток или участками клетки или до и после применения лекарства часто можно охарактеризовать простым просмотром фильмов. Эксперименты FCS требуют определенного уровня обработки и более чувствительны к потенциально мешающим влияниям, таким как: вращательная диффузия, вибрации, фотообесцвечивание, зависимость от освещения и цвета флуоресценции, неадекватная статистика и т. Д. В FRAP намного проще изменить объем измерения, что позволяет больший контроль. На практике объемы обычно больше, чем в FCS. Хотя эксперименты с FRAP обычно более качественные, некоторые исследователи изучают FRAP количественно, включая динамику связывания.^[64] Недостатком FRAP в клеточной биологии является возмущение клетки свободными радикалами, вызванное фотообесцвечиванием. Он также менее универсален, поскольку не может измерять концентрацию, вращательную диффузию или совместную локализацию. FRAP требует значительно более высокой концентрации флуорофоров, чем FCS.

Отслеживание частиц

При отслеживании частиц измеряются траектории набора частиц, обычно путем применения алгоритмов отслеживания частиц к фильмам.[1] Преимущество отслеживания частиц состоит в том, что вся динамическая информация сохраняется при измерении, в отличие от FCS, где корреляция усредняет динамику до единой плавной кривой. Преимущество очевидно в системах, показывающих сложную диффузию, где прямое вычисление среднеквадратичного смещения позволяет прямое сравнение с нормальной или степенной диффузией. Чтобы применить отслеживание частиц, частицы должны быть различимы и, следовательно, иметь более низкую концентрацию, чем требуется для FCS. Кроме того, отслеживание частиц более чувствительно к шуму, который иногда может непредсказуемо влиять на результаты.

Двух- и трехфотонное возбуждение FCS

Использование двухфотонного или трехфотонного возбуждения FCS дает несколько преимуществ как с точки зрения пространственного разрешения, так и с точки зрения минимизации фотоповреждений / фотообесцвечивания органических и / или биологических образцов.^{[65][66][67][68][69]}

Смотрите также

• Конфокальная микроскопия
• Флуоресцентная кросс-корреляционная спектроскопия (FCCS)
• Фёрстеровский резонансный перенос энергии (FRET)
• Динамическое рассеяние света
• Коэффициент диффузии

Рекомендации

1. Чен, Х., Фаркас, Э. и Уэбб, В. (2008). Применение флуоресцентной корреляционной спектроскопии in vivo. Биофизические инструменты для биологов, Том 2: Методы in vivo, 89, 3- +.
2. Kwapiszewska, K .; Szczepański, K .; Kalwarczyk, T .; Michalska, B .; Patalas-Krawczyk, P .; Szymański, J .; Андрышевский, Т .; Iwan, M .; Duszyński, J .; Холист, Р. (2020). «Наноразмерная вязкость цитоплазмы сохраняется в линиях клеток человека». J. Phys. Chem. Латыш. 11 (16): 6914–6920. Дои:10.1021 / acs.jpclett.0c01748. ЧВК  7450658. PMID  32787203.
3. Квапишевская, Карина; Кальварчик, Томаш; Михальская, Бернадета; Щепаньски, Кшиштоф; Szymański, Jędrzej; Паталас-Кравчик, Паулина; Андрышевский, Томаш; Иван, Михалина; Душинский, Ежи; Холист, Роберт (2019). «Определение состояния олигомеризации белка Drp1 в живых клетках при наномолярных концентрациях». Научные отчеты. 9 (1): 5906. Дои:10.1038 / s41598-019-42418-0. ЧВК  6459820. PMID  30976093.
4. Квапишевская, Карина; Кальварчик, Томаш; Михальская, Бернадета; Щепаньски, Кшиштоф; Шиманский, Енджей; Паталас-Кравчик, Паулина; Андрышевский, Томаш; Иван, Михалина; Душинский, Ежи; Холист, Роберт (2019). «Определение состояния олигомеризации белка Drp1 в живых клетках при наномолярных концентрациях». Научные отчеты. 9 (1): 5906. Дои:10.1038 / s41598-019-42418-0. PMID  30976093.
5. Magde, D .; Elson, E.L .; Уэбб, У. У. (1972). «Термодинамические флуктуации в реагирующей системе: Измерение методом флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Phys Rev Lett. 29 (11): 705–708. Bibcode:1972ПхРвЛ..29..705М. Дои:10.1103 / Physrevlett.29.705.
6. Эренберг, М .; Риглер, Р. (1974). «Вращательное броуновское движение и флуктуации интенсивности флуоресценции». Chem Phys. 4 (3): 390–401. Bibcode:1974CP ...... 4..390E. Дои:10.1016/0301-0104(74)85005-6.
7. Elson, E.L .; Магде, Д. "Флуоресцентная корреляционная спектроскопия I. Концептуальные основы и теория (1974)". Биополимеры. 13: 1–27. Дои:10.1002 / bip.1974.360130102. S2CID  97201376.
8. Magde, D .; Elson, E.L .; Уэбб, В. В. (1974). «Флуоресцентная корреляционная спектроскопия II. Экспериментальная реализация». Биополимеры. 13 (1): 29–61. Дои:10.1002 / bip.1974.360130103. PMID  4818131. S2CID  2832069.
9. Томпсон Н. Л. 1991 «Темы методов флуоресцентной спектроскопии», том 1, изд. Дж. Р. Лакович (Нью-Йорк: Пленум), стр. 337–78
10. Риглер, Р., Ю. Mets1, J. Widengren и P. Kask. «Флуоресцентная корреляционная спектроскопия с высокой скоростью счета и низким фоном: анализ поступательной диффузии. Европейский биофизический журнал (1993) 22(3), 159.
11. Эйген, М .; Риглер, М. (1994). «Сортировка одиночных молекул: приложение к диагностике и эволюционной биотехнологии». Proc. Natl. Акад. Sci. Соединенные Штаты Америки. 91 (13): 5740–5747. Bibcode:1994PNAS ... 91.5740E. Дои:10.1073 / пнас.91.13.5740. ЧВК  44073. PMID  7517036.
12. Риглер, М. (1995). «Корреляции флуоресценции, обнаружение одиночных молекул и скрининг большого числа. Приложения в биотехнологии». J. Biotechnol. 41 (2–3): 177–186. Дои:10.1016 / 0168-1656 (95) 00054-т. PMID  7544589.
13. Кричевский, О .; Бонне, Г. (2002). «Флуоресцентная корреляционная спектроскопия: методика и ее приложения». Rep. Prog. Phys. 65 (2): 251–297. Bibcode:2002RPPh ... 65..251K. Дои:10.1088/0034-4885/65/2/203. S2CID  49429529.
14. Медина, М. А .; Швилл, П. (2002). «Флуоресцентная корреляционная спектроскопия для обнаружения и изучения одиночных молекул в биологии». BioEssays. 24 (8): 758–764. Дои:10.1002 / bies.10118. PMID  12210537. S2CID  3860264.
15. Майборода, О. А .; van Remoortere, A .; Tanke, H.J .; Hokke, C.H .; Дилдер, А. М. (2003). «Новый подход к иммуноанализу на основе флуоресцентной корреляционной спектроскопии (FCS)». J. Biotechnol. 107 (2): 185–192. Дои:10.1016 / j.jbiotec.2003.10.007. PMID  14711501.
16. Hess, S.T .; Уэбб, W.W. (2002). «Оптика фокусного объема и экспериментальные артефакты в конфокальной флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Биофиз. J. 83 (4): 2300–2317. Bibcode:2002BpJ .... 83.2300H. Дои:10.1016 / с0006-3495 (02) 73990-8. ЧВК  1302318. PMID  12324447.
17. Höfling, F .; Бамберг, К.-У. И Франош Т. (2011). «Аномальный перенос разрешен в пространстве и времени с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Мягкая материя. 7 (4): 1358–1363. arXiv:1003.3762. Bibcode:2011SMat .... 7.1358H. Дои:10.1039 / C0SM00718H. S2CID  18905838.
18. Бэнкс, Д. С .; Фрадин, К. (2005). «Аномальная диффузия белков из-за молекулярного скопления». Биофиз. J. 89 (5): 2960–2971. Bibcode:2005BpJ .... 89.2960B. Дои:10.1529 / biophysj.104.051078. ЧВК  1366794. PMID  16113107.
19. Sengupta, P .; Garai, K .; Balaji, J .; Periasamy, N .; Маити, С. (2003). «Измерение распределения размеров в сильно неоднородных системах с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Биофиз. J. 84 (3): 1977–1984. Bibcode:2003BpJ .... 84.1977S. Дои:10.1016 / с0006-3495 (03) 75006-1. ЧВК  1302767. PMID  12609900.
20. Kohler, R.H .; Schwille, P .; Webb, W.W .; Хэнсон, М.Р. (2000). «Активный транспорт белка через пластидные канальцы: скорость, определенная количественно с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии». J Cell Sci. 113 (22): 3921–3930.
21. Widengren, J .; Mets; Риглер, Р. (1995). «Флуоресцентная корреляционная спектроскопия триплетных состояний в растворе: теоретическое и экспериментальное исследование». J. Chem. Phys. 99 (36): 13368–13379. Дои:10.1021 / j100036a009.
22. Берлянд, К. М. (2004). «Обнаружение специфических последовательностей ДНК с помощью двухцветной двухфотонной корреляционной спектроскопии флуоресценции». J. Biotechnol. 108 (2): 127–136. Дои:10.1016 / j.jbiotec.2003.11.006. PMID  15129721.
23. Müller, C.B .; Loman, A .; Пачеко, В .; Коберлинг, Ф .; Willbold, D .; Richtering, W .; Эндерлейн, Дж. (2008). «Точное измерение диффузии с помощью многоцветной двухфокусной корреляционной флуоресцентной спектроскопии». EPL. 83 (4): 46001. Bibcode:2008EL ..... 8346001M. Дои:10.1209/0295-5075/83/46001.
24. Wang, F .; Shi, Y .; Luo, S .; Chen, Y .; Чжао, Дж. (2012). «Конформационный переход одиночных цепей поли (N-изопропилакриламида) в процессе его консистентности: исследование методом флуоресцентной корреляционной спектроскопии и масштабного анализа. (2012)». Макромолекулы. 45 (22): 9196–9204. Bibcode:2012MaMol..45.9196W. Дои:10.1021 / ma301780f.
25. Пристинский, Д .; Козловская, В .; Сухишвили, С. А. (2005). «Исследование диффузии слабого полиэлектролита в водных растворах с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии». J. Chem. Phys. 122 (1): 014907. Bibcode:2005ЖЧФ.122а4907П. Дои:10.1063/1.1829255. PMID  15638700.
26. Widengren, J .; Швилл, П. (2000). «Характеристика фотоиндуцированной изомеризации и обратной изомеризации цианинового красителя Cy5 с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии. (2000)». J. Phys. Chem. А. 104 (27): 6416–6428. Bibcode:2000JPCA..104.6416W. Дои:10.1021 / jp000059s.
27. Loman, A .; Dertinger, T .; Коберлинг, Ф .; Эндерлейн, Дж. (2008). «Сравнение эффектов оптического насыщения в традиционной и двухфокусной корреляционной флуоресцентной спектроскопии (2008)». Chem. Phys. Латыш. 459 (1): 18–21. Bibcode:2008CPL ... 459 ... 18 л. Дои:10.1016 / j.cplett.2008.05.018.
28. Петраек; Швилл, П. (2008). «Точное измерение коэффициентов диффузии с использованием сканирующей флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Биофиз. J. 94 (4): 1437–1448. Bibcode:2008BpJ .... 94.1437P. Дои:10.1529 / biophysj.107.108811. ЧВК  2212689. PMID  17933881.
29. Wawrezinieck et al. (2005) Биофиз Дж.
30. Lenne et al. (2006) EMBO J.
31. Guia et al. (2011) Sci Signal.
32. Ruprecht et al. (2011) Биофиз Дж.
33. Billaudeau et al. (2013) Методы в энзимологии
34. Masuda et al. (2005) Биофиз Дж.
35. Humpolıckova et al. (2006) Биофиз Дж.
36. Венгер и другие. (2007) Биофиз Дж.
37. Eggeling et al. (2009) Природа
38. Meseth, U .; Wohland, T .; Rigler, R .; Фогель, Х. (1999). «Разрешение измерений корреляции флуоресценции. (1999)». Биофиз. J. 76 (3): 1619–1631. Bibcode:1999BpJ .... 76,1619M. Дои:10.1016 / с0006-3495 (99) 77321-2. ЧВК  1300138. PMID  10049342.
39. Дигман, М. А .; Dalal, R .; Хорвиц, А. Ф .; Граттон, Э. (2008). «Отображение количества молекул и яркости в лазерном сканирующем микроскопе». Биофиз. J. 94 (6): 2320–2332. Bibcode:2008BpJ .... 94.2320D. Дои:10.1529 / biophysj.107.114645. ЧВК  2257897. PMID  18096627.
40. Chen, Y .; Müller, J. D .; Итак, П. Т. Ц .; Граттон, Э. (1999). «Гистограмма счета фотонов в флуоресцентной флуктуационной спектроскопии». Биофиз. J. 77 (1): 553–567. Bibcode:1999BpJ .... 77..553C. Дои:10.1016 / с0006-3495 (99) 76912-2. ЧВК  1300352. PMID  10388780.
41. Kask, P .; Пало, К .; Ullmann, D .; Галл, К. (1999). «Анализ распределения интенсивности флуоресценции и его применение в технологии обнаружения биомолекул». Proc. Natl. Акад. Sci. СОЕДИНЕННЫЕ ШТАТЫ АМЕРИКИ. 96 (24): 13756–13761. Bibcode:1999PNAS ... 9613756K. Дои:10.1073 / пнас.96.24.13756. ЧВК  24137. PMID  10570145.
42. Мюллер, Дж. Д. (2004). «Кумулянтный анализ в флуоресцентной флуктуационной спектроскопии». Биофиз. J. 86 (6): 3981–3992. Bibcode:2004BpJ .... 86.3981M. Дои:10.1529 / biophysj.103.037887. ЧВК  1304299. PMID  15189894.
43. Qian, H .; Элсон, Э. (1990). «Об анализе моментов высших порядков флуктуаций флуоресценции». Биофиз. J. 57 (2): 375–380. Bibcode:1990БпДж .... 57..375Q. Дои:10.1016 / с0006-3495 (90) 82539-х. ЧВК  1280678. PMID  2317556.
44. Remaut, K .; Лукас, Б .; Braeckmans, K .; Sanders, N.N .; Smedt, S.C. De; Демейстер, Дж. (2005). «FRET-FCS как инструмент для оценки стабильности олигонуклеотидных препаратов после внутриклеточной доставки». J Control Rel. 103 (1): 259–271. Дои:10.1016 / j.jconrel.2004.11.019. PMID  15710516.
45. Машаги, А .; и другие. (2008). «Характеристика динамики белков при асимметричном делении клеток с помощью сканирующей флуоресцентной корреляционной спектроскопии». Биофизический журнал. 95 (11): 5476–5486. Bibcode:2008BpJ .... 95.5476P. Дои:10.1529 / biophysj.108.135152. ЧВК  2586573. PMID  18805921.
46. Дигман, M.A .; Sengupta, P .; Wiseman, P.W .; Brown, C.M .; Horwitz, A.R .; Граттон, Э. (2005). "Флуктуационно-корреляционная спектроскопия с помощью лазерного сканирующего микроскопа: использование скрытой временной структуры". Биофиз. J. 88 (5): L33–36. Bibcode:2005BpJ .... 88L..33D. Дои:10.1529 / biophysj.105.061788. ЧВК  1305524. PMID  15792971.
47. Скиннер, J.P .; Chen, Y .; Мюллер, Дж. Д. (2005). "Позиционно-чувствительная сканирующая корреляционная флуоресцентная спектроскопия". Биофиз. J. 89 (2): 1288–1301. Bibcode:2005BpJ .... 89.1288S. Дои:10.1529 / biophysj.105.060749. ЧВК  1366613. PMID  15894645.
48. Ruan, Q .; Cheng, M.A .; Леви, М .; Gratton, E .; Мантулин, W.W. (2004). «Пространственно-временные исследования динамики мембран: сканирующая флуоресцентная корреляционная спектроскопия (SFCS)». Биофиз. J. 87 (2): 1260–1267. Bibcode:2004BpJ .... 87.1260R. Дои:10.1529 / biophysj.103.036483. ЧВК  1304464. PMID  15298928.
49. Berglund, A .; Мабучи, Х. (2005). «Tracking-FCS: флуоресцентная корреляционная спектроскопия отдельных частиц» (PDF). Опт. выражать. 13 (20): 8069–8082. Bibcode:2005OExpr..13.8069B. Дои:10.1364 / опекс.13.008069. PMID  19498837.
50. Sisan, D.R .; Arevalo, R .; Graves, C .; McAllister, R .; Урбах, И. (2006). «Корреляционная флуоресцентная спектроскопия с пространственным разрешением с использованием конфокального микроскопа с вращающимся диском». Биофизический журнал. 91 (11): 4241–4252. Bibcode:2006BpJ .... 91.4241S. Дои:10.1529 / biophysj.106.084251. ЧВК  1635679. PMID  16950838.
51. Kannan, B .; Guo, L .; Sudhaharan, T .; Ахмед, S .; Маруяма, I .; Wohland, T. (2007). «Пространственно разрешенная флуоресцентная корреляционная микроскопия полного внутреннего отражения с использованием камеры электронного умножителя с зарядовой связью». Аналитическая химия. 79 (12): 4463–4470. Дои:10.1021 / ac0624546. PMID  17489557.
52. Wachsmuth, M .; Waldeck, W .; Ланговски, Дж. (2000). «Аномальная диффузия флуоресцентных зондов внутри ядер живых клеток исследована с помощью пространственно разрешенной корреляционной флуоресцентной спектроскопии». J. Mol. Биол. 298 (4): 677–689. Дои:10.1006 / jmbi.2000.3692. PMID  10788329. S2CID  21791229.
53. Hebert, B .; Константино, С .; Уайзман, П. У. (2005). «Пространственно-временная корреляционная спектроскопия изображений (STICS): теория, проверка и применение для картирования скорости белков в живых клетках СНО». Биофиз. J. 88 (5): 3601–3614. Bibcode:2005BpJ .... 88.3601H. Дои:10.1529 / biophysj.104.054874. ЧВК  1305507. PMID  15722439.
54. Wiseman, P.W .; Squier, J. A .; Ellisman, M. H .; Уилсон, К. Р. (2000). «Двухфотонная корреляционная спектроскопия изображения с высокой скоростью изображения (ICS) и кросс-корреляционная спектроскопия изображений (ICCS)». J. Microsc. 200 (Pt 1): 14–25. Дои:10.1046 / j.1365-2818.2000.00736.x. PMID  11012824. S2CID  6554931.
55. Петерсен, Н. О .; Wiseman, P.W .; Seger, O .; Магнуссон, К. Э. (1993). «Количественное определение распределения мембранных рецепторов методом корреляционной спектроскопии изображений: концепция и применение». Биофиз. J. 65 (3): 1135–1146. Bibcode:1993BpJ .... 65.1135P. Дои:10.1016 / S0006-3495 (93) 81173-1. ЧВК  1225831. PMID  8241393.
56. Колин, Д.Л .; Ronis, D .; Wiseman, P.W. (2006). "k-Корреляционная спектроскопия космических изображений: метод точных измерений переноса, не зависящий от фотофизики флуорофоров ». Биофиз. J. 91 (8): 3061–3075. Bibcode:2006BpJ .... 91.3061K. Дои:10.1529 / biophysj.106.082768. ЧВК  1578478. PMID  16861272.
57. Semrau, S .; Шмидт, Т. (2007). «Спектроскопия корреляции изображений частиц (PICS): получение корреляций в нанометровом масштабе из данных о положении одной молекулы с высокой плотностью». Биофиз. J. 92 (2): 613–621. Bibcode:2007BpJ .... 92..613S. Дои:10.1529 / biophysj.106.092577. ЧВК  1751376. PMID  17085496.
58. Semrau, S .; Holtzer, L .; Gonzalez-Gaitan, M .; Шмидт, Т. (2011). «Количественная оценка биологических взаимодействий с помощью кросс-корреляционной спектроскопии изображений частиц (PICCS)». Биофиз. J. 100 (7): 1810–1818. Bibcode:2011BpJ ... 100.1810S. Дои:10.1016 / j.bpj.2010.12.3746. ЧВК  3072609. PMID  21463595.
59. >Kisley, L .; Higgins, D .; Weiss, S .; Landes, C.F. (2015). «Определение характеристик пористых материалов с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии с оптической флуктуационной визуализацией сверхвысокого разрешения». САУ Нано. 9 (9): 9158–9166. Дои:10.1021 / acsnano.5b03430. PMID  26235127.
60. Dutta, C .; Бишоп, Л. Д. С .; Landes, C.F. (2020). «Визуализация переключаемых взаимодействий белков с активной пористой полимерной подложкой». J. Phys. Chem. B. 124 (22): 4412–4420. Дои:10.1021 / acs.jpcb.0c01807. PMID  32441098.
61. Shayegan, M .; Michnick, S.W .; Лесли, С. Л. (2019). "Исследование неоднородной диффузии в микросредах полимеров с разделенными фазами при ограничении". Варенье. Chem. Soc. 141 (19): 7751–7757. Дои:10.1021 / jacs.8b13349. PMID  31017394.
62. Lieto, A.M .; Томпсон, Н. (2004). «Полное внутреннее отражение с флуоресцентной корреляционной спектроскопией: нефлуоресцентные конкуренты». Биофиз. J. 87 (2): 1268–1278. Bibcode:2004BpJ .... 87.1268L. Дои:10.1529 / biophysj.103.035030. ЧВК  1304465. PMID  15298929.
63. Capoulade, J .; Wachsmuth, M .; Hufnagel, L .; Кноп, М. (сентябрь 2011 г.). «Количественная флуоресцентная визуализация диффузии и взаимодействия белков в живых клетках». Природа Биотехнологии. 29 (9): 835–839. Дои:10.1038 / nbt.1928. PMID  21822256. S2CID  10493584.
64. Sprague, B.L .; МакНелли, Дж. (2005). «FRAP-анализ связывания: правильный и подходящий». Тенденции в клеточной биологии. 15 (2): 84–91. Дои:10.1016 / j.tcb.2004.12.001. PMID  15695095.
65. Диаспро, А .; Робелло, М. (1999). «Микроскопия с многофотонным возбуждением для изучения биосистем». Европейская микроскопия и анализ. 5: 5–7.
66. Bagatolli, L.A .; Граттон, Э. (2000). «Двухфотонная флуоресцентная микроскопия сосуществующих липидных доменов в гигантских однослойных везикулах бинарных смесей фосфолипидов». Biophys J. 78 (1): 290–305. Bibcode:2000БпДж .... 78..290Б. Дои:10.1016 / с0006-3495 (00) 76592-1. ЧВК  1300637. PMID  10620293.
67. Schwille, P .; Haupts, U .; Maiti, S .; Уэбб, W. (1999). «Молекулярная динамика в живых клетках, наблюдаемая с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии с одно- и двухфотонным возбуждением». Биофизический журнал. 77 (10): 2251–2265. Bibcode:1999BpJ .... 77.2251S. Дои:10.1016 / S0006-3495 (99) 77065-7. ЧВК  1300505. PMID  10512844.
68. Микроспектроскопия в ближнем инфракрасном диапазоне, флуоресцентная микроскопия, инфракрасная химическая визуализация и ядерно-магнитно-резонансный анализ высокого разрешения семян сои, соматических зародышей и отдельных клеток., Baianu, I.C. и другие. 2004г., В Добыча и анализ нефти., Д. Лутрия, редактор, стр. 241–273, AOCS Press., Шампейн, Иллинойс.
69. Обнаружение одиночных раковых клеток с помощью ближней инфракрасной микроскопии, инфракрасной химической визуализации и флуоресцентной микроскопии. 2004.I. К. Баяну, Д. Костеску, Н. Э. Хофманн и С. С. Корбан, q-bio / 0407006 (июль 2004 г.)

дальнейшее чтение

• Риглер Р. и Виденгрен Дж. (1990). Сверхчувствительное обнаружение одиночных молекул с помощью флуоресцентной корреляционной спектроскопии, Бионаука (Эд. Klinge & Owman) стр. 180
• Oehlenschläger, F .; Schwille, P .; Эйген, М. (1996). «Обнаружение РНК ВИЧ-1 с помощью амплификации на основе последовательностей нуклеиновых кислот в сочетании с флуоресцентной корреляционной спектроскопией». Proc. Natl. Акад. Sci. Соединенные Штаты Америки. 93 (23): 12811–12816. Bibcode:1996PNAS ... 9312811O. Дои:10.1073 / пнас.93.23.12811. ЧВК  24002. PMID  8917501.

внешняя ссылка

• Хаустейн, Эльке; Швилле, Петра (2004). «Спектроскопические методы одиночных молекул». Текущее мнение в структурной биологии. 14 (5): 531–540. Дои:10.1016 / j.sbi.2004.09.004. HDL:11858 / 00-001M-0000-0029-D76C-C. PMID  15465312.
• FCS Classroom
• Руководство Stowers Institute FCS
• Руководство FCS Консорциума миграции ячеек
• Флуоресцентная корреляционная спектроскопия (FCS) (Becker & Hickl GmbH, веб-страница)